Preview

Проблемы Эндокринологии

Расширенный поиск

Гормональные и генетические причины развития крипторхизма

https://doi.org/10.14341/probl13242

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Крипторхизм — частая врожденная патология половой системы, определяемая с частотой 2–3% среди доношенных новорожденных мальчиков. На сегодняшний день выделены гены-кандидаты, участвующие в эмбриональной миграции яичка, однако данных об их роли в развитии крипторхизма недостаточно. Генетические причины крипторхизма удается установить в 5–7% случаев. В обзоре собраны данные о роли инсулиноподобного пептида 3, антимюллерова гормона, гонадотропных гормонов и андрогенов в эмбриональной миграции яичка. Проанализированы результаты оригинальных исследований частоты и характера мутаций гена INSL3 и его рецептора (RFXP2) при различных вариантах крипторхизма. Представлены данные о значении инсулиноподобного пептида 3 и антимюллерова гормона как маркеров нарушения функции яичек, ассоциированной с развитием крипторхизма. Показаны возможности диагностики врожденного гипогонадотропного гипогонадизма, ассоциированного с развитием крипторхизма. Анализ результатов современных исследований определяет необходимость гормонального и генетического обследования пациентов с изолированным крипторхизмом для выявления причин его развития и определения тактики ведения пациентов.

Для цитирования:


Орешкина Е.М., Болотова Н.В., Пылаев Т.Е., Аверьянов А.П., Райгородская Н.Ю. Гормональные и генетические причины развития крипторхизма. Проблемы Эндокринологии. 2023;69(5):99-106. https://doi.org/10.14341/probl13242

For citation:


Oreshkina E.M., Bolotova N.V., Pylaev T.E., Averyanov A.P., Raygorodskaya N.Y. Hormonal and genetic causes of cryptorchidism. Problems of Endocrinology. 2023;69(5):99-106. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13242

ВВЕДЕНИЕ

Крипторхизм — частая врожденная патология половой системы, определяемая с частотой 2–3% среди доношенных новорожденных мальчиков. Этиология врожденного крипторхизма гетерогенна. Генетические причины крипторхизма плохо изучены и установлены у очень небольшого числа пациентов. Развитие крипторхизма часто обусловлено эндокринными нарушениями. Крипторхизм может быть проявлением хромосомной патологии и различных моногенных заболеваний. Двусторонний крипторхизм может являться ранним клиническим проявлением врожденного гипогонадотропного гипогонадизма либо отражать нарушение внутриутробного развития самого яичка. Однако в большинстве случаев пациенты с крипторхизмом наблюдаются детскими хирургами, и причины его развития остаются неверифицированными. Послеоперационное динамическое наблюдение не является обязательным, вследствие чего недостаточно данных о катамнезе пациентов с крипторхизмом.

Анализ данных современных исследований о генетических причинах и клиническом наблюдении пациентов с крипторхизмом необходим для поиска оптимального подхода к диагностике и наблюдению мальчиков с крипторхизмом.

Процесс внутриутробной миграции яичка реализуется под контролем генетических и гормональных факторов. Трансабдоминальная фаза — этап эмбриональной миграции от места первичной закладки яичка до внутреннего пахового кольца. Пахово-мошоночная фаза включает прохождение яичка через паховый канал, от его внутреннего кольца до дна мошонки [1][2]. Изучению генетического и гормонального контроля эмбриональной миграции яичка посвящено большое количество экспериментальных исследований, но клинические исследования о генетических причинах крипторхизма малочисленны и недостаточно информативны.

ФИЗИОЛОГИЧЕСКАЯ РОЛЬ ИНСУЛИНОПОДОБНОГО ПЕПТИДА 3 (INSL3) В ЭМБРИОНАЛЬНОЙ МИГРАЦИИ ЯИЧЕК

В процессе трансабдоминальной миграции яичка ключевую роль играет инсулиноподобный пептид 3 (INSL3). INSL3 секретируется фетальными клетками Лейдига с 10-й по 15-ю неделю внутриутробного развития под действием хорионического гонадотропина [2][3]. INSL3 отражает степень дифференцировки и функционального состояния эмбриональных клеток Лейдига [4][5]. Bay K.V. и соавт. выявили положительные корреляции INSL3 с уровнем лютеинизирующего гормона (ЛГ) и тестостерона у здоровых мальчиков в возрасте 3 мес и обнаружили снижение концентрации INSL3 при завершении периода мини-пубертата наряду с физиологическим снижением секреции гонадотропинов [4].

Ключевым моментом трансабдоминальной фазы миграции яичка является дифференцировка губернакулюм и закрепление яичка в паховом канале, что происходит под контролем INSL3 и его рецептора RFXP2 [6][7]. При исследовании образцов пуповинной крови 12 плодов наблюдалась тенденция к увеличению концентрации INSL3 в сыворотке плода с 15 до 20 нед гестации [8]. Пик максимального внутриутробного повышения INSL3 приходился на 15–18 нед гестации, что совпадает с дифференцировкой губернакулюм и окончанием абдоминальной фазы опущения яичек. Авторы предполагают, что увеличение продукции INSL3 после 15-й недели свидетельствует не только об участии данного фактора в трансабдоминальной фазе опущения яичек, но и в пахово-мошоночной, за счет расширения пахового канала.

Гипотеза об участии INSL3 и его рецептора во второй фазе миграции яичек подтверждается в экспериментальном исследовании на животных [9]. У мышей с паховым крипторхизмом и инактивацией рецептора ЛГ введение тестостерона вызывало активацию экспрессии мРНК RXFP2 в губернакулюм, а введение INSL3 активировало дифференцировку ее клеток, что в совокупности способствовало опущению яичек в мошонку. Лечение тестостероном в отсутствие INSL3 не приводило к дифференцировке клеток губернакулюм, а INSL3 значительно усиливал клеточное деление только в присутствии тестостерона. Введение антагониста INSL3 приводило к подавлению сигнального пути RXFP2 и снижало INSL3-индуцированную пролиферацию клеток губернакулюм. Эти данные свидетельствуют о том, что андрогенная регуляция пахово-мошоночного опускания яичка опосредована активацией экспрессии RXFP2 в губернакулюм.

Участие INSL3 во второй фазе миграции яичек изучалось в исследованиях с участием новорожденных [10]. Уровень INSL3 у 43 детей с крипторхизмом был снижен и составил 225,7±19,3 нг/л в сравнении с контрольной группой здоровых новорожденных — 271,4±18,4 нг/л (P=0,031). Концентрации тестостерона не отличались между исследуемой и контрольной группами, 0,47±0,45 нмоль/л и 0,41±0,31 нмоль/л соответственно (P=0,7).

Понимание фундаментальной роли INSL3 в опущении яичек побудило к активному поиску мутаций или полиморфизмов в гене INSL3 и его рецепторе у пациентов с идиопатическим крипторхизмом. По данным исследований, мутации генов INSL3 и RFXP2 (LGR8) в гомозиготном состоянии были выявлены у небольшого числа пациентов с крипторхизмом. В исследовании C. Foresta, A. Ferlin приняли участие 135 взрослых мужчин в возрасте 33,0±2,8 года, которые перенесли оперативное лечение по поводу одностороннего (n=55) и двустороннего (n=72) крипторхизма. Мутации генов INSL3 и RFXP2 были найдены у 7,4% пациентов. Нуклеотидные замены L9L, A24G, A60T и L42L были выявлены как у мужчин с крипторхизмом, так и у контрольной группы, которые были расценены как полиморфизмы. Две мутации P93L, одна мутация R102C и три мутации R102H были обнаружены в гетерозиготном состоянии при двустороннем крипторхизме у 5,4% мужчин и при одностороннем крипторхизме у 4,2% пациентов. Эти мутации не были обнаружены в группе контроля, на основании чего авторы предполагают, что они могут быть рассмотрены как патогенные [11].

В исследовании A. Ferlin и соавт. с участием 540 пациентов с различными вариантами крипторхизма было выявлено три полиморфизма: A24G, A60T и V43L. Мутации R102C, R102H, P93L и W69R были обнаружены в гетерозиготном состоянии в 2,2% случаев. Эти нуклеотидные замены не были обнаружены в контрольной группе. У пациентов с мутациями R102H и P93L отмечалась олигозооспермия различной степени выраженности. Пациенты с мутацией W69R страдали бесплодием, у одного из них была выявлена семинома [12].

До недавнего времени миссенс-мутация Т222P в гене RXFP2 (LGR8) считалась наиболее распространенной и вероятной причиной трансабдоминальной задержки яичка. Несколько исследований были посвящены изучению клинической значимости этой замены, однако данные о патогенности Т222P оказались противоречивыми. В исследовании C. Foresta, A. Ferlin и соавт. гетерозиготная мутация T222P была выявлена у 1,8% пациентов с двусторонним крипторхизмом и 2,8% мужчин с односторонним крипторхизмом [11]. В исследовании A. Ferlin, M. Simonato и соавт. с участием 87 мужчин мутация T222P была выявлена путем прямого секвенирования гена RFXP2 у 4,6% пациентов с различными вариантами крипторхизма [13]. Данная мутация также была описана у ребенка с двусторонним крипторхизмом в сочетании с члено-мошоночной гипоспадией и микропенией при кариотипе 46, ХY [14]. В исследовании A. Ferlin (2006 г.) среди 303 детей с крипторхизмом мутация T222P была выявлена в 5 случаях, и все они отмечены в группе мальчиков с двусторонним крипторхизмом. Частота данной мутации у детей составила 4,2%. В контрольной группе этой мутации обнаружено не было [15][16].

Параллельно группа ученых из Италии, Испании и Египта провели скрининг миссенс-мутации T222P гена RXFP2 у 187 испанских и у 199 итальянских мужчин с различными формами крипторхизма в анамнезе. В испанской когорте вариант T222P присутствовал с одинаковой частотой как у пациентов с крипторхизмом — 1,6%, так и в группе контроля — 1,8%. В группе итальянцев данный вариант встречался значительно чаще у мужчин с крипторхизмом — 4,5%, чем в контрольной группе — 1,4%. На основании полученных результатов авторы предполагают, что гетерозиготная замена Т222P не является патогенным вариантом и обозначают необходимость расширения поиска причин крипторхизма [17]. В генетической базе данных ClinVar мутация присутствует как вариант неопределенной клинической значимости. Остается открытым вопрос, является ли патогенной мутация T222P гена RFXP2 в гомозиготном состоянии.

Особый интерес с точки зрения клинической значимости мутаций представляют описания семейных случаев крипторхизма. Патогенный вариант RFXP2 с аутосомно-рецессивным типом наследования был описан в семейном случае у четырех мальчиков с изолированным двусторонним крипторхизмом. Было проведено полное секвенирование экзома у четырех мальчиков и их родителей. Геномный анализ выявил гомозиготный миссенс-вариант гена RXFP2 (c.1496G>A.p.Gly499Glu) у всех пациентов и гетерозиготный вариант у обоих родителей. Других вариантов, которые могли бы являться причиной крипторхизма, обнаружено не было [18].

Таким образом, общая частота встречаемости мутаций INSL3 и RFXP2, по данным клинических исследований, составляет от 2,3 до 9,2%. Наиболее вероятные патогенные варианты мутаций INSL3 встречаются практически с одинаковой частотой среди пациентов с односторонним и двусторонним крипторхизмом, тогда как мутации RXFP2 чаще выявлены при двустороннем крипторхизме. В большинстве исследований не описан уровень расположения гонад у исследуемых пациентов, в связи с чем сложно сопоставить выявленные мутации с клиническими вариантами крипторхизма, невозможно оценить распространенность мутаций среди паховых и абдоминальных форм, что требует дальнейшего изучения.

РОЛЬ АМГ В РАЗВИТИИ КРИПТОРХИЗМА

Антимюллеров гормон (АМГ) является еще одним фактором, контролирующим трансабдоминальную фазу миграции яичка. В раннем эмбриональном периоде АМГ секретируется незрелыми клетками Сертоли и не зависит от контроля фолликулостимулирующего гормона (ФСГ). Под воздействием АМГ мюллеровы протоки регрессируют у плода мужского пола на 8–9-й неделе внутриутробного развития, препятствуя развитию матки, маточных труб и проксимальной части влагалища [19]. При мутациях в гене AMH и его рецептора у плодов мужского пола развивается синдром персистенции мюллеровых протоков (СПМП), который характеризуется абдоминальным крипторхизмом и наличием производных мюллеровых протоков [20]. Абдоминальная задержка яичка при СПМП возникает в результате механического препятствия. Гонада остается прикрепленной к фаллопиевой трубе, которая препятствует ее опусканию [21]. В экспериментальных исследованиях было показано, что у животных с инактивацией гена рецептора AMH отмечается нормальное опущение яичек в мошонку [22]. Авторами были обследованы 11 самцов мышей с гетерозиготными мутациями рецептора AMH и 12 мышей с гомозиготными мутациями. Мюллеровы протоки присутствовали у гомозигот, частично присутствовали у гетерозиготных самцов и отсутствовали у контрольной группы животных. Кремастерная мышца была значительно хуже развита к моменту рождения у гомозиготных животных, чем у гетерозигот (Р<0,01) и у контрольной группы (P<0,001). Несмотря на наблюдаемую разницу в развитии кремастерных мышц, у мышей с мутациями рецептора AMH развитие губернакулюм было нормальным и у всех самцов яички были опущены в мошонку. Таким образом, авторы делают вывод, что у людей с синдромом персистирующих мюллеровых протоков крипторхизм развивается в результате механических препятствий для миграции яичка в процессе абдоминальной фазы.

Концентрация сывороточного АМГ также отражает функцию клеток Сертоли. В исследовании F. Tüttelmann и соавт. изучали взаимосвязь сывороточного АМГ с уровнем гонадотропных гормонов и половых стероидов, объемом гонад, концентрацией сперматозоидов у пациентов с олигоспермией, крипторхизмом и у здоровых мужчин в возрасте от 20 до 53 лет. У пациентов с крипторхизмом были выявлены сильные обратные корреляции АМГ с уровнем ФСГ и прямые корреляции АМГ с объемом гонад и концентрацией сперматозоидов в эякуляте, чего не отмечалось в других группах [23]. Корреляций между АМГ и ЛГ или тестостероном не выявлено. Авторы делают вывод, что АМГ можно считать маркером числа, функции и созревания клеток Сертоли именно у пациентов с крипторхизмом. При этом его определение в рутинной клинической практике нецелесообразно, уровень АМГ не отражает степень пролиферации клеток Сертоли у здоровых мужчин в отличие от препубертатных мальчиков [19][23]. Действительно, уровень АМГ высок у плода, затем его концентрация увеличивается в несколько раз в период мини-пубертата под воздействием ФСГ, что обеспечивает пролиферацию незрелых клеток Сертоли [24].

В исследовании Grinspon R.P. и соавт. описаны изменения уровня АМГ у препубертатных мальчиков с крипторхизмом [25]. Проанализированы результаты исследования АМГ 310 препубертатных мальчиков (Tanner 1 и объем гонад ≤3 мл): 186 с двусторонним крипторхизмом и 124 с односторонним крипторхизмом. Уровень АМГ мальчиков с крипторхизмом значимо не отличался от контроля в возрастной группе 1–6 мес, но в группах от 6 мес до 1,9 года и от 2 до 8,9 года был существенно ниже. Концентрация АМГ оказалась ниже 3 перцентиля у 22,6% мальчиков с двусторонним и у 8,1% мальчиков с односторонним крипторхизмом. На основании исследования большой когорты пациентов авторы делают вывод о тестикулярной дисфункции большого числа пациентов с крипторхизмом. Снижение секреции АМГ, главным образом при билатеральном крипторхизме, — результат снижения числа клеток Сертоли в неопущенных яичках и/или нарушения их функции.

РОЛЬ АНДРОГЕНОВ В ОПУЩЕНИИ ЯИЧЕК

Андрогены не играют значимой роли в первой фазе опускания яичек. При нарушениях биосинтеза или действия андрогенов гонады чаще всего преодолевают абдоминальную фазу и определяются по ходу паховых каналов [26][27]. Основная роль андрогенов — в обеспечении прохождения яичка через паховый канал и закрепление его положения в мошонке. В экспериментальных исследованиях на грызунах было показано, что андрогены влияют на генитофеморальный нерв (GFN), взаимодействуя с его медиатором CGRP (calcitonin gene-related peptide), которые регулируют пролиферацию и подвижность губернакулюм [28]. В американском исследовании E.M. Kaftanovskaya и соавт. изучались механизмы передачи сигнала AR (андрогенового рецептора) в губернакулюм в процессе пахово-мошоночной фазы миграции яичка. Исследователи установили, что инактивация AR в клетках губернакулюм у экспериментальных животных приводит к развитию пахового крипторхизма, нарушению развития кремастерной мышцы и инфертильности. При гистологическом исследовании гонад обнаружено аномальное строение семенных канальцев, снижение количества сперматозоидов в результате вакуолизации клеток Сертоли [29]. Авторы сделали вывод, что именно губернакулюм является органом-мишенью для андрогенов в процессе второй фазы миграции яичек, а также подтвердили связь крипторхизма и инфертильности.

Поскольку андрогены играют решающую роль в пахово-мошоночной фазе опущения яичка, многие заболевания и синдромы, связанные с гипогонадизмом или снижением действия андрогенов, могут проявляться крипторхизмом. Мутации в гене AR вызывают синдром нечувствительности к андрогенам разной степени, от более тяжелых форм с полным женским фенотипом до частичной нечувствительности с микропенией, гипоспадией и крипторхизмом или самых легких форм с нарушением только сперматогенеза [30].

В некоторых исследованиях изучалась связь между длиной повторов нуклеиновых кислот CAG и GGN в 1 экзоне гена AR и крипторхизмом. В метаанализе Q. Wang были выделены группы с односторонним и двусторонним крипторхизмом, и область повторов CAG была значительно длиннее у пациентов с двусторонним крипторхизмом (р<0,05). Также было выявлено, что длина повторов GGN была значительно выше у пациентов с крипторхизмом по сравнению с контрольной группой. Авторы делают выводы, что полиморфизм повторов AR CAG и GGN может нарушать функцию AR и таким образом влиять на процесс опущения яичек [31]. Количество повторов CAG в гене AR также было изучено в недавнем исследовании D.A. Landero-Huerta с участием 62 мексиканских пациентов с изолированным паховым крипторхизмом, двустороннюю форму имели 30/62 мужчин. При анализе длины области CAG у пациентов с крипторхизмом было выявлено 25,03±2,58 повтора в сравнении с 22,72±3,1 в контрольной группе (р≤0,0001). Количество повторов CAG в гене AR преобладало у пациентов с крипторхизмом и подтверждало влияние полиморфизма гена AR на развитие крипторхизма [32].

Андрогензависимая фаза миграции яичка происходит под контролем ЛГ гипофиза плода в период с 27-й по 35-ю недели внутриутробного развития. Отсутствие или снижение концентрации ЛГ в данный период или поражение ЛГ-рецептора способствует развитию крипторхизма [33]. В экспериментальных исследованиях инактивация ЛГ-рецепторов у животных вызывала гипоплазию клеток Лейдига, снижение выработки INSL3 и тестостерона. Гистологическое исследование показало нарушение дифференцировки губернакулюм и кремастерных мышц, что способствовало формированию двусторонней задержки яичка [9].

ГЕНЫ-КАНДИДАТЫ, УЧАСТВУЮЩИЕ В РАЗВИТИИ КРИПТОРХИЗМА

Результаты исследований на животных и небольшие клинические исследования позволили выделить другие потенциальные гены-кандидаты, участвующие в развитии крипторхизма. Есть данные о том, что ген опухоли Вильмса 1 (WT1) участвует в дифференцировке губернакулюм и влияет на опущение яичек, а также может регулировать экспрессию гена AR [34][35]. В исследовании с участием экспериментальных животных при иммуногистохимическом анализе была обнаружена выраженная экспрессия WT1 в клетках Сертоли и губернакулюм. У 40% мышей с делецией гена WT1 был выявлен левосторонний крипторхизм [35].

Еще одним геном-кандидатом, ассоциированным с развитием крипторхизма, является HOXA10. Ген HOXA10 расположен на 7 хромосоме и играет роль в развитии губернакулюм во внутриутробном периоде [36]. При анализе гена HOXA10 в группе из 98 пациентов с различными формами крипторхизма была выявлена мутация N27K у мальчика с односторонним крипторхизмом. Данного варианта не было обнаружено в контрольной группе. Авторы предполагают, что мутации в гене HOXA10 участвуют в патогенезе крипторхизма, но не являются частой причиной [37].

F. Rodriguez и соавт. предположили, что гены Ras/MARK pathwayучаствуют в развитии изолированного крипторхизма. В исследовании приняли участие 59 мальчиков в возрасте 1–15 лет с изолированным крипторхизмом. У 5% мальчиков с односторонним и двусторонним крипторхизмом методом сравнительной геномной гибридизации были обнаружены микродупликации гена RAF1. Уровни ЛГ, ФСГ и тестостерона в сыворотке обследованных пациентов соответствовали возрастным нормам, но отмечалось значительное снижение концентрации ингибина В [38]. Участие гена RAF1в развитии крипторхизма было показано в исследовании N.O. Hadziselimovic, C. Geyter и соавт. Авторами проанализированы результаты биопсии яичек 18 мальчиков с различными формами изолированного крипторхизма. В биоптатах неопущенных яичек выявлено снижение экспрессии генов рецептора фактора роста фибробластов (FGFR1), SOS1 и RAF1. Авторы предполагают, что нарушение экспрессии генов FGFR1, SOS1 и RAF1 может являться причиной развития крипторхизма [39].

КРИПТОРХИЗМ И ГИПОГОНАДОТРОПНЫЙ ГИПОГОНАДИЗМ

Двусторонний паховый крипторхизм или крипторхизм в сочетании с микропенией может являться манифестным симптомом врожденного гипогонадотропного гипогонадизма (гипоГГ) [40]. По данным исследований, частота крипторхизма у пациентов с гипоГГ составляет 40–69,6% [41][42]. При мутациях гена KAL-1 двусторонний крипторхизм встречается у 67% пациентов, при мутациях гена FGFR1/KAL-2 — у 20% [43]. При гипоГГ, обусловленном мутацией генов PROK2 и PROKR2, были установлены корреляции между тяжестью мутации и выраженностью клинической картины. При моноаллельных мутациях у пациентов реже встречались крипторхизм и микропения, отмечались больший объем яичек и более высокие уровни в сыворотке крови ЛГ, ФСГ и тестостерона, чем при биаллельных [27].

В исследовании E.M. Laitinen, J. Tommiska (2011) изучалась роль генов FGFR1, PROK2, PROKR2, TAC3 или TACR3, лежащих в основе гипоГГ, в этиологии изолированного крипторхизма. В исследовании приняли участие 54 пациента с различными формами крипторхизма. Мутаций данных генов у пациентов выявлено не было. Гетерозиготные мутации гена GNRHR были выявлены у 2 пациентов с односторонним крипторхизмом, но они также присутствовали у контрольной группы мужчин (p=0,62). Авторы делают заключение, что изолированный крипторхизм не связан с патологией генов, лежащих в основе гипоГГ [44].

Патогенетической основой крипторхизма при врожденном гипоГГ является отсутствие внутриутробной и постнатальной выработки собственного ЛГ и тестостерона [45]. Определение уровней гонадотропных и половых гормонов у пациентов с гипоГГ в период мини-пубертата дает возможность ранней диагностики данного состояния и позволяет планировать инициацию пубертата в физиологические сроки, предотвращая возможную задержку полового созревания [46].

МИНИ-ПУБЕРТАТ И КРИПТОРХИЗМ

Ряд исследований посвящен изучению особенностей течения периода мини-пубертата у мальчиков с изолированным крипторхизмом. В исследование K. Bay и соавт. были включены 62 доношенных новорожденных мальчика с крипторхизмом. Уровень INSL3, тестостерона и гонадотропных гормонов определяли в пуповинной крови сразу после рождения и в сыворотке крови в возрасте 2,5–4,5 мес. Мальчики с крипторхизмом имели сниженный уровень INSL3 пуповинной крови (р=0,001) в сравнении со здоровыми детьми. В возрасте 3 мес уровень INSL3 существенно не отличался, однако отмечалось значимое повышение соотношения ЛГ/INSL3 по сравнению с группой контроля (р=0,036). Выявленные у здоровых детей значимые положительные корреляции между INSL3 и ЛГ, тестостероном не наблюдались у мальчиков с крипторхизмом, что свидетельствовало о дисфункции клеток Лейдига. На основании полученных результатов авторы делают вывод, что INSL3, определяемый в период мини-пубертата, может служить маркером наличия функционирующей тестикулярной ткани и имеет клиническое значение при обследовании пациентов с нарушением формирования гонад [4].

В исследовании в Финляндии и Дании c участием 388 финских и 433 датских мальчиков с различными формами крипторхизма в возрасте 2,5–3,5 мес продемонстрированы более высокие уровни ЛГ (P<0,028), соотношений ЛГ/тестостерон (P<0,008) и ЛГ/свободный тестостерон (P<0,031), но одинаковые уровни тестостерона у мальчиков с крипторхизмом по сравнению с контрольной группой. Авторы предполагают, что уровень ЛГ повышается в период мини-пубертата компенсаторно, для поддержания нормального уровня тестостерона, и свидетельствует о нарушении функции клеток Лейдига. При анализе результатов также выявлены повышение концентрации сывороточного ФСГ (P<0,0001) и низкие показатели ингибина В (P<0,015) у мальчиков с крипторхизмом в период мини-пубертата. Полученные данные могут свидетельствовать о нарушении функции клеток Сертоли [47]. В отличие от результатов финского и датского исследований, у мальчиков в возрасте от 1 до 6 мес в Нидерландах и США не выявлено существенных различий в уровнях ФСГ, ингибина В или АМГ в сыворотке крови между детьми с крипторхизмом и контрольной группой [48][49].

Интерпретация вышеизложенных результатов затруднена из-за различий в возрасте при проведении исследований и отсутствия распределения пациентов в зависимости от уровня расположения яичек. В исследовании 2014 г. нами было показано, что пациенты с паховым и абдоминальным крипторхизмом имеют существенные различия клинико-гормональных показателей в период мини-пубертата [50]. В исследование вошли мальчики в возрасте 1–3 мес с паховым крипторхизмом (n=32) и абдоминальной задержкой яичка (n=10). Концентрации ЛГ и ФСГ в сыворотке крови у пациентов с паховым крипторхизмом были выше, чем у здоровых мальчиков. При этом уровни тестостерона и ингибина B практически соответствовали показателям здоровых детей. В группе мальчиков с абдоминальным крипторхизмом выявлено повышение концентрации ЛГ в сочетании со снижением уровня тестостерона у 50%, высокие значения ФСГ с одновременным снижением сывороточной концентрации ингибина B относительно группы контроля — у 80% мальчиков. Таким образом, установлены существенные различия клинико-гормональных показателей мальчиков с крипторхизмом в период мини-пубертата в зависимости от уровня расположения яичка.

ЛЕЧЕНИЕ КРИПТОРХИЗМА

Лечение пациентов с крипторхизмом на сегодняшний день остается нерешенной проблемой. По рекомендациям Европейской ассоциации урологов, лечение крипторхизма следует начинать в возрасте 6–12 мес, не позднее 18 мес [51]. Это связано с результатами ряда исследований. При гистологическом исследовании паховых тестикул было выявлено прогрессирующее уменьшение количества герминативных клеток у детей старше 1–2 лет [52]. В исследовании C. Kollin, J.B. Stukenborg при гистологии 213 абдоминальных и паховых яичек количество герминативных клеток и клеток Сертоли, а также объем яичка в возрасте 9 мес были значительно больше, чем в 3 года. Объем яичка коррелировал с количеством герминативных клеток и клеток Сертоли в любом возрасте. Авторы делают следующие выводы: чем дольше яички находятся во внутрибрюшном положении, тем меньшее количество герминативных клеток сохраняется. Дооперационное положение яичек имеет меньшее значение, если операция выполняется в ранние сроки [53].

Предпочтительным методом лечения крипторхизма на сегодняшний день является орхиопексия. По рекомендациям Европейской и Американской ассоциаций урологов, не рекомендуется гормональное лечение для опущения яичек у пациентов с крипторхизмом, что связано с низкой эффективностью гормональной терапии и отсутствием долгосрочных результатов исследований [51][54]. По результатам исследований, направленных на сравнение хирургической и гормональной тактики лечения, орхиопексия была успешна у 95% пациентов. При терапии хорионическим гонадотропином человека (ХГЧ) и Гн-РГ опущение яичек в мошонку отмечалось только в 15% случаев [55][56]. В недавнем метаанализе Y. Wei, Y. Wang 2018 г. по результатам семи рандомизированных контролируемых исследований оценивалась эффективность лечения ХГЧ по сравнению с ГнРГ и плацебо. Анализ этих исследований показал, что лечение ХГЧ эффективно не больше, чем плацебо, и не было никаких существенных различий в эффективности лечения ХГЧ по сравнению с лечением ГнРГ при двустороннем (P=0,76) и при одностороннем крипторхизме (P=0,61) [57].

Некоторые исследования продемонстрировали пагубные последствия для жизнеспособности герминативных клеток яичка при использовании ХГЧ-терапии, нарушение сперматогенеза и уменьшение объема тестикул, на основании чего авторы сделали вывод о выборе орхиопексии как предпочтительного метода лечения при идиопатическом крипторхизме [51][54][58].

Таким образом, многочисленные исследования показали неэффективность гормональной терапии с целью опущения яичек при крипторхизме. Исключение составляют случаи, когда крипторхизм является одним из проявлений гипогонадотропного гипогонадизма.

C. Bouvattier и соавт. подчеркивают целесообразность терапии гонадотропинами у пациентов с крипторхизмом при врожденном гипоГГ для снижения необходимости хирургического лечения и нормализации уровня тестостерона, АМГ, ингибина В. Гормональное лечение крипторхизма у мальчиков с гипоГГ возможно в первые месяцы жизни — в период мини-пубертата [42].

В исследовании D.T. Papadimitriou, D. Chrysis был описан положительный эффект терапии гонадотропинами у 10 новорожденных мальчиков с гипоГГ в возрасте 3,5 мес (1,9–7,8). У всех пациентов отмечались двусторонний крипторхизм и микропенис ≤2 см. В ходе лечения длина полового члена увеличилась с медианы 2,0 до 3,8 см, со значительным повышением сывороточных уровней тестостерона, ингибина В и АМГ. В ходе терапии оба яичка опустились в мошонку у 8 пациентов. У 2 пациентов одно из яичек поднялось в паховый канал, в связи с чем было проведено хирургическое лечение до 1 года [59]. Терапия комбинацией препаратов рФСГ и тестостерона не оказала подобного эффекта на опущение яичек. Всем детям была проведена двусторонняя орхиопексия в возрасте 2,0±0,7 года. D.S. Swee, R. Quinton на основании вышеописанных результатов было высказано предположение о том, что экзогенная терапия тестостероном, в отличие от терапии рЛГ у детей с гипоГГ, не способна приводить к необходимой концентрации инстратестикулярных андрогенов и уровня INSL3, что необходимо для опущения и закрепления яичек в мошонке [60].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ данных литературы показал сложные и разнообразные патофизиологические механизмы тестикулярной ретенции. Генетические причины крипторхизма мало изучены, что связано с многообразием этиологических факторов. Нами проанализированы результаты нескольких когортных исследований, направленных на верификацию причин крипторхизма, по результатам которых выявить генетические поломки, влияющие на процесс внутриутробной миграции яичка, удавалось в 5–7% случаев. В большинстве случаев результаты этих исследований были получены на разнородных когортах пациентов, включающих односторонние и двусторонние формы, паховую и абдоминальную задержку, что создавало сложности в оценке результатов.

До настоящего времени нет четкого алгоритма ведения пациентов с различными формами крипторхизма, подразумевающего междисциплинарный подход и включение эндокринологического обследования в программу наблюдения мальчиков с крипторхизмом. Это определяет необходимость дальнейших исследований.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источники финансирования. Работа выполнена в рамках проекта Перспективного научного исследования «Ранняя молекулярная верификация патологии полового развития в период мини-пубертата» Саратовского государственного медицинского университета им. В.И. Разумовского.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Участие авторов. Орешкина Е.М. — поиск и анализ литературы, написание основного текста статьи; Болотова Н.В. — поиск и анализ литературы, написание актуальности и заключения, редактирование текста статьи; Пылаев Т.Е. — поиск и анализ литературы, редактирование текста статьи; Аверьянов А.П. — поиск и анализ литературы, редактирование текста статьи; Райгородская Н.Ю. — поиск и анализ литературы, планирование и дизайн статьи, редактирование текста. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.

Список литературы

1. Hutson JM, Southwell BR, Li R, et al. The regulation of testicular descent and the effects of cryptorchidism. Endocrine Reviews. 2013;34(5):725–752. doi: https://doi.org/10.1210/er.2012-1089

2. Ivell R. The molecular basis of cryptorchidism. Mol Hum Reprod. 2003;9(4):175-181. doi: https://doi.org/10.1093/molehr/gag025

3. Feng S, Bogatcheva NV, Truong A, et al. Developmental expression and gene regulation of insulin-like 3 receptor rxfp2 in mouse male reproductive organs. Biol Reprod. 2007;77(4):671-680. doi: https://doi.org/10.1095/biolreprod.107.060442

4. Bay K, Virtanen HE, Hartung S, et al. Insulin-like factor 3 levels in cord blood and serum from children: Effects of age, postnatal hypothalamic-pituitary-gonadal axis activation, and cryptorchidism. J Clin Endocrinol Metab. 2007;92(10):4020-4027. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2007-0974

5. Foresta C, Zuccarello D, Garolla A, Ferlin A. Role of hormones, genes, and environment in human cryptorchidism. Endocr Rev. 2008;29(5):560-580. doi: https://doi.org/10.1210/er.2007-0042

6. Bogatcheva NV, Truong A, Feng S, et al. GREAT/LGR8 Is the Only Receptor for Insulin-Like 3 Peptide. Mol Endocrinol. 2003;17(12):2639-2646. doi: https://doi.org/10.1210/me.2003-0096

7. Gorlov IP, Kamat A, Bogatcheva NV, et al. Mutations of the GREAT gene cause cryptorchidis. Hum Mol Genet. 2002;11(19):2309-2318. doi: https://doi.org/10.1093/hmg/11.19.2309

8. Harrison SM, Bush NC, Wang Y, et al. Insulin-Like Peptide 3 (INSL3) serum concentration during human male fetal life. Front Endocrinol (Lausanne). 2019;10(12):2639-2646. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00596

9. Yuan FP, Li X, Lin J, et al. The role of RXFP2 in mediating androgen-induced inguinoscrotal testis descent in LH receptor knockout mice. Reproduction. 2010;139(4):759-769. doi: https://doi.org/10.1530/REP-09-0518

10. Fenichel P, Lahlou N, Coquillard P, et al. Cord blood Insulin-like peptide 3 (INSL3) but not testosterone is reduced in idiopathic cryptorchidism. Clin Endocrinol (Oxf). 2015;82(2):242-247. doi: https://doi.org/10.1111/cen.12500

11. Foresta C, Ferlin A. Role of INSL3 and LGR8 in cryptorchidism and testicular functions. Reprod Biomed Online. 2004;9(3):294-298. doi: https://doi.org/10.1016/S1472-6483(10)62144-X

12. Ferlin A, Bogatcheva NV, Gianesello L, et al. Insulinlike factor 3 gene mutations in testicular dysgenesis syndrome: clinical and functional characterization. Mol Hum Reprod. 2006;12(6):401-406. doi: https://doi.org/10.1093/molehr/gal043

13. Ferlin A, Simonato M, Bartoloni L, et al. The INSL3-LGR8/GREAT ligand-receptor pair in human cryptorchidism. J Clin Endocrinol Metab. 2003;88(9):4273-4279. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2003-030359

14. Tenenbaum-Rakover Y, Admoni O, Elias-Assad G, et al. The evolving role of whole-exome sequencing in the management of disorders of sex development. Endocr Connect. 2021;10(6):620-629. doi: https://doi.org/10.1530/EC-21-0019

15. Ferlin A, Zuccarello D, Zuccarello B, et al. Genetic alterations associated with cryptorchidism. JAMA. 2008;300(19):2271-2276. doi: https://doi.org/10.1001/jama.2008.668

16. Ferlin A, Zuccarello D, Garolla A, et al. Mutations in INSL3 and RXFP2 genes in cryptorchid boys. Ann N Y Acad Sci. 2009;1160(1):213-214. doi: https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2008.03784.x

17. Nuti F, Marinari E, Erdei E, et al. The leucine-rich repeat-containing G protein-coupled receptor 8 gene T222P mutation does not cause cryptorchidism. J Clin Endocrinol Metab. 2008;93(3):1072-1076. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2007-1993

18. Ayers K, Kumar R, Robevska G, et al. Familial bilateral cryptorchidism is caused by recessive variants in RXFP2. J Med Genet. 2019;56(11):727-733. doi: https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2019-106203

19. Matuszczak E, Hermanowicz A, Komarowska M, Debek W. Serum AMH in physiology and pathology of male gonads. Int J Endocrinol. 2013;2013:1-6. doi: https://doi.org/10.1155/2013/128907

20. Appasamy M, Muttukrishna S, Pizzey A, et al. Relationship between male reproductive hormones, sperm DNA damage and markers of oxidative stress in infertility. Reprod Biomed Online. 2007;14(2):159-165. doi: https://doi.org/10.1016/S1472-6483(10)60783-3

21. Hutson JM, Lopez-Marambio FA. The possible role of AMH in shortening the gubernacular cord in testicular descent: A reappraisal of the evidence. J Pediatr Surg. 2017;52(10):1656-1660. doi: https://doi.org/10.1016/j.jpedsurg.2017.05.021

22. Bartlett JE, Lee SMY, Mishina Y, et al. Gubernacular development in Müllerian inhibiting substance receptor-deficient mice. BJU Int. 2002;89(1):113-118. doi: https://doi.org/10.1046/j.1464-4096.2001.00783.x

23. Tüttelmann F, Dykstra N, Themmen APN, et al. Anti-Müllerian hormone in men with normal and reduced sperm concentration and men with maldescended testes. Fertil. Steril. 2009;91(5):1812-1819. doi: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.02.118

24. Boukari K, Meduri G, Brailly-Tabard S, et al. Lack of androgen receptor expression in Sertoli cells accounts for the absence of anti-Mullerian hormone repression during early human testis development. Clin Endocrinol Metab. 2009;94(5):1818-1825. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2008-1909

25. Grinspon RP, Gottlieb S, Bedecarrás P, Rey RA. Anti-Müllerian hormone and testicular function in prepubertal boys with cryptorchidism. Front Endocrinol (Lausanne). 2018;(9):182. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00182

26. Deeb A, Hughes IA. Inguinal hernia in female infants: a cue to check the sex chromosomes? BJU Int. 2005;96(3):401-403. doi: https://doi.org/10.1111/j.1464-410X.2005.05639.x

27. Sarfti J, Dode C, Young J. Kallmann syndrome caused by mutations in the PROK2 and PROKR2 genes: Pathophysiology and genotype-phenotype correlations. Front Horm Res. 2010;(39):121-132. doi: https://doi.org/10.1159/000312698

28. Barthold JS, Ivell R. A neuro-hormonal systems approach to understanding the complexity of cryptorchidism susceptibility. Front Endocrinol. 2018;9(401):1-7. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00401

29. Kaftanovskaya EM, Huang Z, Barbara AM, et al. Cryptorchidism in mice with an androgen receptor ablation in gubernaculum testis. Mol Endocrinol. 2012;26(4):598-607. doi: https://doi.org/10.1210/me.2011-1283

30. Hughes IA, Davies JD, Bunch TI, et al. Androgen insensitivity syndrome. Lancet. 2012;380(9851):1419-1428. doi: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(12)60071-3

31. Wang Q, Ge X, Wang H-X, Shi Q-M, et al. Association of androgen receptor gene CAG and GGN repeat polymorphism with cryptorchidism: A meta-analysis. Andrologia. 2018;50(3):e12909. doi: https://doi.org/10.1111/and.12909

32. Landero-Huerta DA, Vigueras-Villaseñor RM, Taja-Chayeb L, et al. Analysis of the CAG tract length in the androgen receptor gene in Mexican patients with nonsyndromic cryptorchidism. J Pediatr Endocrinol Metab. 2021;34(7):843-849. doi: https://doi.org/10.1515/jpem-2020-0378

33. Svechnikov K, Landreh L, Weisser J, et al. Origin, development and regulation of human leydig cells. Horm Res Paediatr. 2010;73(2):93-101. doi: https://doi.org/10.1159/000277141

34. Köhler B, Delezoide A-L, Boizet-Bonhoure B, et al. Coexpression of Wilms’ tumor suppressor 1 (WT1) and androgen receptor (AR) in the genital tract of human male embryos and regulation of AR promoter activity by WT1. J Mol Endocrinol. 2007;38(5):547-554. doi: https://doi.org/10.1677/JME-06-0020

35. Kaftanovskaya EM, Neukirchner G, Huff V, Agoulnik AI. Left-sided cryptorchidism in mice with Wilms tumour 1 gene deletion in gubernaculum testis. Pathology. 2013;230(1):1-8. doi: https://doi.org/10.1002/path.4161

36. Chavez-Saldana M, Vigueras-Villasenor RM, Yokoyama-Rebollar E, et al. Single nucleotide polymorphisms associated with nonsyndromic cryptorchidism in Mexican patients. Andrologia. 2018;50(1):10. doi: https://doi.org/10.1111/and.12788

37. Cheng Z, Wang M, Xu C, et al. Mutational analysis of HOXA10 gene in Chinese patients with cryptorchidism. Andrologia. 2017;49(1):e12592. doi: https://doi.org/10.1111/and.12592

38. Rodriguez F, Vallejos C, Giraudo F, et al. Copy number variants of Ras/MAPK pathway genes in patients with isolated cryptorchidism. Andrology. 2017;5(5):923-930. doi: https://doi.org/10.1111/andr.12390

39. Hadziselimovic NO, de Geyter C, Demougin P, et al. Decreased expression of FGFR1, SOS1, RAF1 genes in cryptorchidism. Urol Int. 2010;84(3):353-361. doi: https://doi.org/10.1159/000288242

40. Bouvattier C, Maione L, Bouligand J, et al. Neonatal gonadotropin therapy in male congenital hypogonadotropic hypogonadism. Nat Rev Endocrinol. 2012;8(3):172-182. doi: https://doi.org/10.1038/nrendo.2011.164

41. Vizeneux A, Hilfiger A, Bouligand J, et al. Congenital hypogonadotropic hypogonadism during childhood: presentation and genetic analyses in 46 boys. PLoS One. 2013;8(10):e77827. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0077827

42. Montenegro LR, Silveira LFG, Tusset C, et al. Combined use of multiplex ligation-dependent probe amplification and automatic sequencing for identification of KAL1 defects in patients with Kallmann syndrome. Fertil Steril. 2013;100(3):854-859. doi: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.04.045

43. Salenave S, Chanson P, Bry H, et al. Kallmann’s syndrome: A comparison of the reproductive phenotypes in men carrying KAL1 and FGFR1/KAL2 mutations. J Clin Endocrinol Metab. 2008;93(3):758-763. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2007-1168

44. Laitinen E-M, Tommiska J, Virtanen HE, et al. Isolated cryptorchidism: No evidence for involvement of genes underlying isolated hypogonadotropic hypogonadism. Mol Cell Endocrinol. 2011;341(1-2):35-38. doi: https://doi.org/10.1016/j.mce.2011.05.015

45. Renault CH, Aksglaede L, Wøjdemann D, et al. Minipuberty of human infancy – A window of opportunity to evaluate hypogonadism and differences of sex development? Ann Pediatr Endocrinol Metab. 2020;25(2):84-91. doi: https://doi.org/10.6065/apem.2040094.047

46. Bizzarri C, Cappa M. Ontogeny of hypothalamus-pituitary gonadal axis and minipuberty: An ongoing debate? Front Endocrinol (Lausanne). 2020;(11):187. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2020.00187

47. Suomi A-M, Main KM, Kaleva M, et al. Hormonal changes in 3-month-old cryptorchid boys. J Clin Endocrinol Metab. 2006;91(3):953-958. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2004-2318

48. Pierik FH, Deddens JA, Burdorf A, et al. The hypothalamus-pituitary-testis axis in boys during the first six months of life: a comparison of cryptorchidism and hypospadias cases with controls. Int J Androl. 2009;32(5):453-461. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2605.2008.00877.x

49. Barthold JS, Manson J, Regan V, et al. Reproductive hormone levels in infants with cryptorchidism during postnatal activation of the pituitary-testicular axis. J Urol. 2004;172(4P2):1736-1741. doi: https://doi.org/10.1097/01.ju.0000138523.24337.be

50. Райгородская Н.Ю., Болотова Н.В., Морозов Д.А., Захарова Н.Б. Состояние гонад у мальчиков с крипторхизмом в период мини-пубертата // Проблемы эндокринологии. — 2014. — Т. 60. — №2. — С. 4-7. doi: https://doi.org/10.14341/probl20146024-7

51. Radmayr C, Bogaert G, Burgu B, et al. EAU Guidelines on Paediatric Urology. Paediatric Urology. 2022;15-18. https://d56bochluxqnz.cloudfront.net/documents/full-guideline/EAU-Guidelines-on-Paediatric-Urology-2022.pdf

52. Park KH, Lee JH, Han JJ, et al. Histological evidences suggest recommending orchiopexy within the first year of life for children with unilateral inguinal cryptorchid testis. Int J Urol. 2007;14(7):616-621. doi: https://doi.org/10.1111/j.1442-2042.2007.01788.x

53. Kollin C, Stukenborg JB, Nurmio M, et al. Boys with undescended testes: Endocrine, volumetric and morphometric studies on testicular function before and after orchidopexy at nine months or three years of age. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97(12):4588-4595. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2012-2325

54. Kolon TF, Herndon CDA, Baker LA, et al. Evaluation and treatment of cryptorchidism: AUA guideline. J Urol. 2014;192(2):337-345. doi: https://doi.org/10.1016/j.juro.2014.05.005

55. Henna M, Del Nero RM, Zugaiar S. Sampaio C, et al. Hormonal cryptorchidism therapy: systematic review with metanalysis of randomized clinical trials. Pediatr Surg Int. 2004;20(5):337-345. doi: https://doi.org/10.1007/s00383-004-1198-3

56. Ong C, Hasthorpe S, Hutson JM. Germ cell development in the descended and cryptorchid testis and the effects of hormonal manipulation. Pediatr Surg Int. 2005;21(4):240-254. doi: https://doi.org/10.1007/s00383-005-1382-0

57. Wei Y, Wang Y, Tang X, et al. Efficacy and safety of human chorionic gonadotropin for treatment of cryptorchidism: A meta‐analysis of randomised controlled trials. J Paediatr Child Health. 2018;54(8):900-906. doi: https://doi.org/10.1111/jpc.13920

58. Dunkel L, Taskinen S, Hovatta O, et al. Germ cell apoptosis after treatment of cryptorchidism with human chorionic gonadotropin is associated with impaired reproductive function in the adult. J Clin Invest. 1997;100(9):2341-2346. doi: https://doi.org/10.1172/JCI119773

59. Papadimitriou DT, Chrysis D, Nyktari G, et al. Replacement of male mini-puberty. J Endocr Soc. 2019;3(7):1275-1282. doi: https://doi.org/10.1210/js.2019-00083

60. Swee DS, Quinton R. Current concepts surrounding neonatal hormone therapy for boys with congenital hypogonadotropic hypogonadism. Expert Rev Endocrinol Metab. 2022;17(1):47-61. doi: https://doi.org/10.1080/17446651.2022.2023008


Об авторах

Е. М. Орешкина
Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского
Россия

Орешкина Елена Максимовна

SPIN-код: 3180-0531

410012, Саратов, ул. Большая казачья, д. 112


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



Н. В. Болотова
Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского
Россия

Болотова Нина Викторовна, д.м.н., профессор

SPIN-код: 5061-1600

Саратов


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



Т. Е. Пылаев
Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского
Россия

Пылаев Тимофей Евгеньевич, к.б.н.

SPIN-код: 181082

Саратов


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



А. П. Аверьянов
Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского
Россия

Аверьянов Андрей Петрович, д.м.н., профессор

SPIN-код: 1940-8093

Саратов


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



Н. Ю. Райгородская
Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского
Россия

Райгородская Надежда Юрьевна, д.м.н., доцент

SPIN-код: 4227-4358

Саратов


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



Рецензия

Для цитирования:


Орешкина Е.М., Болотова Н.В., Пылаев Т.Е., Аверьянов А.П., Райгородская Н.Ю. Гормональные и генетические причины развития крипторхизма. Проблемы Эндокринологии. 2023;69(5):99-106. https://doi.org/10.14341/probl13242

For citation:


Oreshkina E.M., Bolotova N.V., Pylaev T.E., Averyanov A.P., Raygorodskaya N.Y. Hormonal and genetic causes of cryptorchidism. Problems of Endocrinology. 2023;69(5):99-106. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13242

Просмотров: 2419


ISSN 0375-9660 (Print)
ISSN 2308-1430 (Online)